一条清晰、准确的DNA分子量标准，是琼脂糖凝胶电泳结果可靠的前提。DNA Marker 1kb由特定分子量的双链DNA片段组成，已混有上样缓冲液，适用于凝胶电泳时作为DNA分子量标准。所有片段均由等质量不同长度DNA片段组合而成的质粒经酶切、纯化后获得，因此电泳时条带更加清晰、致密，条带之间的质量比更精确、真实。
- 产品概述：为什么条带更清晰、质量比更精确
- 产品参数一览
- 使用案例
- 使用方法与操作建议
- 注意事项与常见现象解读
- 常见问题解答（FAQ）
本制品是由特定分子量的双链 DNA 片段组成，已混有上样缓冲液，适用于凝胶电泳时作为 DNA 分子量标准。
本制品中所有片段均由等质量不同长度 DNA 片段组合而成的质粒经酶切、纯化后获得。这一制备方式带来了两个直接优势：
由于所有片段来自同一质粒的酶切产物，各片段之间的比例固定且精确，电泳时条带形态规整，不易出现拖尾或弥散。
若上样量为 5 μl，4000 bp 的 DNA 片段量为 40 ng，其余条带的 DNA 量均为 20 ng。这种精确的质量比设计，使得各条带的亮度差异具有可预期的规律。
核心优势：普通 DNA Marker 若由不同来源的片段混合而成，各片段之间的质量比可能存在偏差。而本产品从单一质粒出发，通过酶切获得所有片段，从源头上保证了各条带质量比的准确性和批次间的一致性。
| 产品名称 | DNA Marker 1KB |
| 货号 | ZD10001 |
| 保存 | 4℃（长期保存请置于 -20℃） |
| 产品组成 | 特定分子量的双链 DNA 片段，已混有上样缓冲液 |
| 质量比设计 | 上样量 5 μl 时，4000 bp 片段量为 40 ng，其余条带均为 20 ng |
| 指示剂 | 已添加二甲苯腈蓝和溴酚两种电泳指示剂 |
规格小结：产品已预混上样缓冲液，无需加热，直接上样即可；4℃ 短期保存、-20℃ 长期保存，使用方便；精确的质量比设计使得条带亮度可预期，便于判断电泳结果是否正常。
下图为 DNA Marker 1kb 在琼脂糖凝胶电泳中的实际检测结果，可见各条带清晰、致密，分子量分布规律，证明该产品可作为可靠的 DNA 分子量标准使用。
从结果可以看出，各分子量条带在凝胶上分布均匀，条带清晰锐利，无明显拖尾或杂带。条带亮度呈现可预期的规律——4000 bp 片段因上样量更高而亮度更强，其余条带亮度一致。当你的待测样本条带位置不确定时，可以用这个 Marker 作为参照快速判断片段大小。
本品无需加热，直接取 5 μl 加入琼脂糖凝胶的加样孔中，进行电泳。
建议电泳条件为 1×TAE 缓冲液，0.6-0.8% 琼脂糖凝胶，正负极之间电压 4-10 V/cm。
本品中已添加二甲苯腈蓝和溴酚两种电泳指示剂。若使用 1% 琼脂糖凝胶，二甲苯腈蓝条带所处位置约为 4 Kb，橙黄条带所处位置约为 50 bp。
电泳结束后 EB 或其他染料染色，在紫外灯下观察电泳条带。
操作提示：电泳图像的质量与琼脂糖、电泳缓冲液有关。使用高质量的琼脂糖以及经常更换电泳缓冲液可达到较好的效果。琼脂糖凝胶浓度对于 DNA 条带的分离效果至关重要，请根据待分离片段的大小选择适合浓度的琼脂糖凝胶。
在使用 DNA Marker 1kb 时，以下现象属于正常情况，无需担心：
等质量的 DNA 条带经电泳、EB 染色后，分子量较小的着色浅、条带粗；分子量较大的着色深、条带细，属正常现象。这是因为 EB 染色是基于 DNA 质量进行结合的，而条带的粗细则与 DNA 片段的大小和扩散程度有关。
EB 染色剂的电性和 DNA 相反，如琼脂糖凝胶在配制过程中预先添加了 EB，在电泳时 EB 会向 DNA 相反的方向迁移。当进行长时间电泳后，会出现 DNA Marker/Ladder 中分子量较小的片段模糊、亮带不明显等现象，属正常情况。建议控制电泳时间，或改用后染色方式。
电泳图像的质量与琼脂糖、电泳缓冲液有关，使用高质量的琼脂糖以及经常更换电泳缓冲液可达到较好的效果。琼脂糖凝胶浓度对于 DNA 条带的分离效果至关重要，请选择适合浓度的琼脂糖凝胶进行电泳。
保存提示：4℃ 保存即可（长期保存请置于 -20℃）。避免反复冻融，建议分装保存。若发现产品出现沉淀或颜色异常，建议停止使用并联系技术支持。
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