本案例基于经典的Bac-to-Bac杆状病毒昆虫细胞表达体系，使用基因合成的方法构建pFast-bac1表达载体，包装昆虫杆状病毒转染SF9细胞，通过SDS-PAGE和Western Blot检测蛋白的表达情况，并通过Ni柱的亲和纯化获得目的蛋白。未经钟鼎生物授权，任何单位及个人不得转载或盗用，违者必究！

杆状病毒-昆虫细胞蛋白表达订单前分析工作：

我们使用钟鼎生物专利的Codon_Score2.0软件分析待表达蛋白的基因序列，其中绿色是频率正常的密码子（使用频率>20%)，灰色是使用频率低于20%的密码子，红色表示使用频率低于10%的密码子，针对草地夜蛾sf9宿主细胞优化基因序列。同时会对蛋白的亲疏水性和跨膜结构域分析，在不影响功能的基础之上，会选取部分或者全部的蛋白序列表达，制定表达成功率更高的实验方案。

一、实验设计
  按照客户的预期，期望通过杆状病毒-昆虫细胞蛋白表达系统以胞外分泌的形式获得目的蛋白，因此我们分析客户提供的Target-Gene序列，整个蛋白序列呈亲水性，自身不带信号肽序列，并且序列本身含有昆虫细胞的稀有密码子，因此我们设计思路为：
1.1、以客户的基因序列翻译的蛋白序列为源模板，通过密码子优化一套更适宜SF9细胞系的基因序列。
1.2、在蛋白序列N端添加GP67信号序列帮助蛋白穿膜分泌表达至胞外，在C端添加6XHis-Tag便于重组蛋白的检测和亲和纯化。
依据上述设计思路，以基因合成的方式构建pFast-bac1-target-gene表达质粒，转化后通过蓝白筛选方法获得重组的Bacmid，经PCR鉴定之后转染sf9细胞，以获得P1代病毒和P2代病毒。侵染200ml小试表达，通过western blot检测蛋白表达情况，确认蛋白表达情况，再通过Ni-resin亲和纯化获得80%以上纯度的目的蛋白。

二、试剂和耗材（略），培养基配方如下（略）

三、主要实验仪器 （略）

四、实验方法及结果
1、pFast-bac1-XXX质粒构建
  采用基于PAS(PCR-based Accurate Synthesis)的方法合成target-gene基因，双酶切连接至pFast-bac1载体的BamH I和Hind III之间；将获得的重组质粒转入TOP10克隆菌株，挑取阳性克隆子测序，测序结果拼接如下所示，单划线区为目的基因区域。紫色区域为酶切位点，黄色区域为GP67信号肽，绿色区域为6XHis标签（序列略）

使用Chromas软件查看测序峰图文件，截取部分序列示例如下

测序拼接序列与理论序列相比对，结果显示获得序列与理论序列100%匹配，比对文件截图如下所示

pFast-bac1-XXX质粒酶切图与载体构建示意图如下所示：

5.4 重组杆状病毒表达载体（Bacmid，杆粒）的构建
5.4.1 杆粒菌株转化
  DH10Bac E.coli 感受态细胞冰上解冻；(2)将200ng的pFastBac1-gene转移载体缓慢加入感受态细胞中，轻轻混匀；(3)冰上放置30min，然后42℃热击90s；(4)迅速冰上静止5min； (5)向EP管里加入900 μl S.O.C.培养基；(6)37℃，225 rpm震荡摇菌4h；(7)取100μl菌液涂于含有50 mg/ml 卡那霉素，7 mg/ml 庆大霉素，10 mg/ml 四环素，100 mg/ml x-gal,and 40 mg/ml IPTG的LB平板；(8)37℃，倒置培养48h。

5.4.2 重组Bacmid质粒的鉴定
  挑取3个白色单克隆菌落接种分别接种于5ml含有50 mg/ml卡那霉素，7 mg/ml 庆大霉素，10 mg/ml 四环素，摇菌，菌液PCR初步筛选阳性克隆菌。小量抽取质粒，PCR验证杆粒正确性，因杆粒大小>135Kb，酶切方式很难进行验证，故采用PCR进行验证，理论上，若目的基因成功转座至Bacmid中，那扩增产物的大小应为（2300bp+目的基因长度）

5.5转染及收获病毒
5.5.1 sf9细胞的培养
  sf9细胞培养使用SF 900Ⅱ培养基培养，一般每3天分瓶传代一次。处于对数生长期细胞且细胞活力大于95%的sf9 细胞用于转染实验。
5.5.2 Sf9细胞冻存方法：
  细胞培养至对数生长期，活力超过90%; 计数，使得储存浓度为1×10⁷ /ml至2×10⁷ /ml; 准备所需量的储存培养液，加DMSO至10%和FBS至30%，预冷培养液保存于4℃; 离心悬浮细胞或单层细胞 100×g，5min，用预冷的冻存液悬浮至所需密度; 混匀，分装至冻存管; 将冻存管放入填有脱脂棉的泡沫盒，-80℃放置1天；移入液氮罐中保存。

5.5.3 Bacmid转染sf9细胞
  在六孔板中接种9×105个细胞/2ml/孔。其中培养基Grace’s medium中含有青霉素50U/ml，链霉素50ug/ml，10％FBS；(2) 27℃培养1h，使细胞贴壁; (3) 在这期间制备Bacmid与Cellfectin Reagent复合物：A. 用100ul不完全Grace’s medium（不含双抗、FBS）稀释1ug Bacmid（约5ul）; B. 在使用前将Cellfectin Reagent倒置5~10次，使其充分混匀，取6ul Cellfectin Reagent用100ul不完全Grace’s medium（不含双抗、FBS）稀释; C. 将上述两种稀释液合并（总体积约210ul），轻轻混匀，室温孵育15~45min; (4) 在制备Bacmid与Cellfectin Reagent复合物期间，将六孔板中的培养基吸掉，用2ml不完全Grace’s medium（不含双抗、FBS）洗涤一次，去掉培养基; (5) 在含有210ul的复合物的管内加入800ul的不完全Graces medium（不含双抗、FBS），轻轻混匀，加到每个孔中; (6) 将六孔板内的细胞孵育5h，27℃；(7) 去掉复合物混合液，然后在每个孔中加2ml完全培养基（SF900含双抗、10％FBS）；(8) 在27℃湿度培养箱中孵育72h或着直到细胞出现病毒感染迹象。上清和沉淀需要分别制备样品，待后期western blot表达鉴定使用。

5.5.4 P1病毒液的收集
  当细胞出现感染迹象时，将细胞上清转移至15ml离心管中，1000rpm离心5min以去除细胞及大的碎片，可用蛋白结合率低的0.2um的滤膜过滤，滴度损失小于10%；将含病毒的上清液转移到另一个无菌带盖的EP管中（一般，P1的滴度在10^6pfu/ml左右）, 将得到的病毒液体避光置于4℃冰箱（短期）。若长期保存，进行1ml分装，避光储存于-80℃。

5.5.5 P2病毒扩增及收获
  原代病毒滴度(P1)较低，介于1×10 ⁶~1×10⁷，扩增后滴度为1×10⁷~1×10⁸。 50ml摇瓶中加入适量的P1病毒.
扩增病毒时可用下列公式进行计算：
MOI(Multiplicity of infection)在0.01~0.1之间,
接种量 （ml）:desired MOI (phf/ml) ×(total number of cells) tlter of viral inoculum (puf/ml)
感染细胞48 h收集的病毒扩增的将近100倍，超过48h 收集的病毒质量较低。每种病毒的收集时间都有一定的差别，如在72h收集，但是随着细胞的裂解，病毒的增殖活力会受损。

5.5.6 病毒滴度检测
  六孔板中细胞120万/孔，静置培养1h，病毒梯度稀释101 102 103 104 105 106 107 108 ，去掉六孔板中的上清，取106、107、108三个滴度病毒加入到六孔板中，平行对照2组，孵育1h，配置空斑培养基，每孔加入2mL空斑培养基；第四天加入中性红染色液；7-10天计数空斑数，算病毒滴度

5.6 重组蛋白表达纯化
  sf9细胞以2×10 ⁶/ml瓶接种于500ml细胞培养瓶中；待细胞生长至对数期，接P2代病毒感染sf9细胞；48~72h内收集细胞及上清，用于重组蛋白表达的检测。
1、依此条件方法放大培养。4℃ 10000g离心20 min，取上清；
2. 利用低压层析系统，上清液以0.5 ml/min流速上样至Ni-IDA Binding-Buffer预平衡的Ni-IDA -Sepharose CL-6B亲和层析柱；
3. 用Ni-IDA Binding-Buffer以0.5 ml/min流速冲洗，至流出液OD280值到达基线；
4. 用Ni-IDA Washing-Buffer(20 mM Tris-HCl，20 mM咪唑，0.15 M NaCl，pH8.0)以1 ml/min流速冲洗，至流出液OD280值到达基线；
5. 用Ni-IDA Elution-Buffer(20 mM Tris-HCl，250 mM咪唑，0.15 M NaCl，pH8.0)以1 ml/min流速洗脱目的蛋白，收集流出液；
6.将上述收集的蛋白溶液加入透析袋中，使用PBS（PH7.4）进行透析过夜；
7. 进行10% SDS-PAGE分析,

5.7 Western Blot检测
1. 样品上样0.01ug。
2. 上样完毕后，聚丙烯酰胺凝胶先90V跑完积层胶，再将电压升至200V直到电泳结束。
3. 电泳结束后，取下凝胶进行转膜，恒压100V转膜，约为1.5小时。
4. 电转结束后，取下膜后先用PBS洗涤4次，每次5分钟。然后置于5%脱脂奶粉封闭液中封闭37℃ 1小时。
5. 用封闭液稀释一抗，膜在一抗稀释液中37℃反应1小时。
6. 洗膜4次，每次5 分钟；用含5%牛奶的封闭液稀释二抗。膜在二抗中37℃反应1小时。
7. 洗膜ECL显影。

六、实验结果

6.1 质粒鉴定结果
6.1.2 PCR鉴定结果
6.2 P2代病毒蛋白表达鉴定
6.3 病毒滴度检测，采用病毒空斑实验方法检测病毒滴度

6.4 通过Ni-IDA-Resin亲和纯化目的蛋白，获得纯度约85%的目的蛋白

5、蛋白质鉴定
  对纯化后的蛋白，依据合同约定，进一步验证蛋白质的正确性，可选的方法有western blot， MS（分子量质谱），PFM(肽指纹图谱）具体的实验案例请参照对应的服务项目，此处省略。

补充说明：
  我们使用昆虫细胞体系获得蛋白，一般情况下，我们会添加信号肽让剪辑成熟的蛋白分泌至培养基中，但是并非所有的蛋白都可以按照预期顺利的分泌或表达。在尊重科研事实的基础之上，我们无法承诺所有的蛋白都可以成功表达或以分泌的形式表达。我们也不承诺获的蛋白具有客户预期的生理学活性。

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