实时荧光定量PCR技术简介

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实时荧光定量PCR目前已经是生命科学领域的一项常规技术。正如其名,它有着实时、荧光、定量三大特点。相比传统PCR,qPCR不仅能检测扩增产物,还能在整个扩增过程中实时监测产物量的变化,从而实现对起始模板的精确定量。本文系统介绍荧光定量PCR的原理、常用方法以及应用领域,并附上原理示意图。

📋 本文内容速览
  1. 荧光定量PCR原理:荧光阈值、Ct值与数学原理
  2. 常用方法一:SYBR Green I 法(原理、优缺点)
  3. 常用方法二:TaqMan 法(原理、探针设计原则、优缺点)
  4. 荧光定量PCR的三大应用领域
  5. 常见问题解答(FAQ)
PART 01荧光定量PCR原理

荧光定量PCR原理是利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,最终精确地对起始模板进行定量分析。

在PCR反应中加入能示踪扩增产物的荧光化学物质,随着PCR反应的进行,扩增产物不断累积,荧光信号强度不断增加。每经过一个循环,收集一次荧光强度信号,得到一条荧光扩增曲线图,从而通过荧光强度变化实时监测产物量的变化。

这里引入两个概念,即荧光阈值和Ct值。

荧光阈值

荧光阈值是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,它可以设定在指数扩增阶段任意位置上,但一般我们将荧光阈值的缺省设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。

荧光阈值
图1 荧光阈值的设定
Ct值

Ct值的定义是PCR扩增过程中,扩增产物(荧光信号)到达阈值时所经过的扩增循环次数。

Ct值
图2 Ct值的定义

荧光定量PCR数学原理

这里要解释的是一个问题,即为什么Ct值与初始模板的量成正比?我们先来看PCR的扩增方程:

N = No × (1+e)n
N:产物分子数  |  No:起始分子数  |  e:扩增效率  |  n:循环次数
指数期
图3 PCR扩增的指数增长期

第n次PCR循环时的荧光信号强度(Rn)等于背景信号强度(RB)加上每个分子的荧光强度(即单位荧光强度,RS)与分子数目的乘积:

Rn = RB + Xo(1+e)nRS
线性方程公式
图4 荧光信号强度方程的推导
荧光定量pcr线性方程
图5 荧光定量PCR线性方程

如果从标准曲线上得到斜率,就可以算出扩增效率,一般来讲PCR扩增效率在90%-110%之间都是可以用于数据分析的,低于100%是因为PCR反应中存在抑制因素,高于100%可能有一些污染、非特异性扩增或者是引物二聚体造成。

核心公式:N = No × (1+e)n。取对数后,Ct值与初始模板浓度的对数呈线性关系,这是qPCR定量的数学基础。扩增效率 E = 10-1/斜率 - 1,理想斜率应在 -3.6 至 -3.1 之间。

PART 02常用方法一:SYBR Green I 法

原理

SYBR Green I法原理
图6 SYBR Green I 法原理

SYBR Green I 是一种结合到小沟部位的双链DNA结合染料,与双链DNA结合后,荧光增强。SYBR Green I 染料只有和双链DNA结合后才发荧光,从而保证荧光信号的增加与PCR产物的增加完全同步。

溶解曲线
图7 溶解曲线分析

优缺点

优点 缺点
1. 使用方便——不必设计复杂的荧光探针
2. 没有序列特异性——可以用于不同的模板
3. 便宜
4. 灵敏
1. 与非特异性产物结合
PART 03常用方法二:TaqMan 法

原理

Taqman法原理
图8 TaqMan 探针结构

该法是最早用于定量的方法,探针完整时,报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩增时,Taq酶的5'-3'外切酶活性将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而荧光监测系统可接收到荧光信号,即每扩增一条DNA链,就有一个荧光分子形成,实现了荧光信号的累积与PCR产物的形成完全同步。

Taqman法原理图
图9 TaqMan 探针在 PCR 延伸过程中被切割释放荧光

TaqMan 探针设计原则

1长度与 Tm 值

长度 30-45bp,Tm 比引物至少高 5℃。

2位置

尽量靠近上游引物。

35' 端避免 G

5' 端不要有 G,G 会有淬灭作用,影响定量。

43' 端封闭

3' 端必须封闭,防止探针在 PCR 中延伸。

优缺点

优点 缺点
1. 对目标序列有很高的特异性——特别适合于 SNP 检测 1. 价格较高
2. 只适合于一个特定的目标
3. 不能进行融解曲线分析
4. 背景高

两种方法的选择:SYBR Green I 法便宜、通用、上手快,适合基因表达初筛和大规模筛选;TaqMan 法特异性好,适合病原体诊断、SNP 分型等需要精准打击的应用。两者不是替代关系,而是互补关系。

PART 04荧光定量PCR应用
绝对定量分析

这是荧光定量PCR的直接应用,对病毒以及病菌的浓度、转基因的拷贝数、RNAi 基因失活率等进行绝对定量分析。

SNP 检测分析

(1) 对未知 SNP 进行分析:即找寻未知的 SNP 或确定某一未知 SNP 与某遗传病的关系。最有效的方法是对那些含有 SNP 的 DNA 链进行测序,确认突变的位置和碱基类别。

(2) 对已知 SNP 进行分析:也就是基因分型,即对不同群体 SNP 遗传多样性检测或在临床上对已知致病基因的遗传病进行基因诊断。比较成熟的技术有 TaqMan 探针法,尤其适合样品量特别大的情况。

基因表达差异分析

例如比较经过不同处理样本之间特定基因的表达差异(如药物处理、物理处理、化学处理等),特定基因在不同时相的表达差异以及 cDNA 芯片或差异结果的确证。

应用领域小结:绝对定量分析(病毒/病菌浓度、转基因拷贝数)→ SNP 检测分析(未知 SNP 寻找、已知 SNP 基因分型)→ 基因表达差异分析(不同处理、不同时相的基因表达比较)。三大应用覆盖了从基础研究到临床诊断的主要需求。

PART 05常见问题解答(FAQ)
实时荧光定量PCR的三大特点是什么?
实时荧光定量PCR正如其名,有实时、荧光、定量三大特点。实时指的是在PCR扩增过程中实时监测产物量的变化;荧光指的是利用荧光信号变化来示踪扩增产物;定量指的是最终对起始模板进行精确的定量分析。这三大特点使qPCR相比传统PCR具有更高的灵敏度和准确性。
什么是荧光阈值?如何设定?
荧光阈值是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,它可以设定在指数扩增阶段任意位置上。一般将荧光阈值的缺省设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。阈值设定直接影响Ct值的读取,设定过低会导致背景信号干扰,设定过高会导致高Ct值样品检测不到。
Ct值的定义是什么?为什么Ct值与初始模板量成正比?
Ct值的定义是PCR扩增过程中,扩增产物(荧光信号)到达阈值时所经过的扩增循环次数。Ct值与初始模板量的关系来源于PCR的扩增方程:N=No×(1+e)^n,其中N为产物分子数,No为起始分子数,e为扩增效率,n为循环次数。将荧光信号强度Rn=RB+XO(1+e)^nRS取对数后,可得Ct值与初始模板浓度的对数呈线性关系,因此Ct值越小,初始模板量越高。
PCR扩增效率的正常范围是多少?异常说明什么?
一般来讲PCR扩增效率在90%-110%之间都是可以用于数据分析的。低于100%是因为PCR反应中存在抑制因素;高于100%可能有一些污染、非特异性扩增或者是引物二聚体造成。扩增效率可通过标准曲线的斜率计算:E=10^(-1/斜率)-1,理想斜率应在-3.6至-3.1之间。
SYBR Green I法和TaqMan法各自的优缺点是什么?
SYBR Green I法的优点:使用方便,不必设计复杂的荧光探针;没有序列特异性,可以用于不同的模板;便宜;灵敏。缺点:与非特异性产物结合,容易产生假阳性。TaqMan法的优点:对目标序列有很高的特异性,特别适合于SNP检测。缺点:价格较高;只适合于一个特定的目标;不能进行融解曲线分析;背景高。
TaqMan探针设计有哪些原则?
TaqMan探针设计原则包括:①长度30-45bp,Tm比引物至少高5℃;②尽量靠近上游引物;③5'端不要有G,G会有淬灭作用,影响定量;④3'端必须封闭。此外,探针应跨越外显子-外显子连接处以避免基因组DNA干扰,避免探针内部形成发卡结构。
荧光定量PCR的主要应用领域有哪些?
荧光定量PCR的主要应用领域包括:①绝对定量分析——对病毒以及病菌的浓度、转基因的拷贝数、RNAi基因失活率等进行绝对定量分析;②SNP检测分析——对未知SNP进行分析(找寻未知SNP或确定其与某遗传病的关系)和对已知SNP进行基因分型;③基因表达差异分析——比较经过不同处理样本之间特定基因的表达差异,特定基因在不同时相的表达差异以及cDNA芯片或差异结果的确证。

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