实时荧光定量PCR目前已经是生命科学领域的一项常规技术。正如其名,它有着实时、荧光、定量三大特点。相比传统PCR,qPCR不仅能检测扩增产物,还能在整个扩增过程中实时监测产物量的变化,从而实现对起始模板的精确定量。本文系统介绍荧光定量PCR的原理、常用方法以及应用领域,并附上原理示意图。
荧光定量PCR原理是利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,最终精确地对起始模板进行定量分析。
在PCR反应中加入能示踪扩增产物的荧光化学物质,随着PCR反应的进行,扩增产物不断累积,荧光信号强度不断增加。每经过一个循环,收集一次荧光强度信号,得到一条荧光扩增曲线图,从而通过荧光强度变化实时监测产物量的变化。
这里引入两个概念,即荧光阈值和Ct值。
荧光阈值是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,它可以设定在指数扩增阶段任意位置上,但一般我们将荧光阈值的缺省设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。
Ct值的定义是PCR扩增过程中,扩增产物(荧光信号)到达阈值时所经过的扩增循环次数。
荧光定量PCR数学原理
这里要解释的是一个问题,即为什么Ct值与初始模板的量成正比?我们先来看PCR的扩增方程:
第n次PCR循环时的荧光信号强度(Rn)等于背景信号强度(RB)加上每个分子的荧光强度(即单位荧光强度,RS)与分子数目的乘积:
如果从标准曲线上得到斜率,就可以算出扩增效率,一般来讲PCR扩增效率在90%-110%之间都是可以用于数据分析的,低于100%是因为PCR反应中存在抑制因素,高于100%可能有一些污染、非特异性扩增或者是引物二聚体造成。
核心公式:N = No × (1+e)n。取对数后,Ct值与初始模板浓度的对数呈线性关系,这是qPCR定量的数学基础。扩增效率 E = 10-1/斜率 - 1,理想斜率应在 -3.6 至 -3.1 之间。
原理
SYBR Green I 是一种结合到小沟部位的双链DNA结合染料,与双链DNA结合后,荧光增强。SYBR Green I 染料只有和双链DNA结合后才发荧光,从而保证荧光信号的增加与PCR产物的增加完全同步。
优缺点
| 优点 | 缺点 |
|---|---|
| 1. 使用方便——不必设计复杂的荧光探针 2. 没有序列特异性——可以用于不同的模板 3. 便宜 4. 灵敏 |
1. 与非特异性产物结合 |
原理
该法是最早用于定量的方法,探针完整时,报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩增时,Taq酶的5'-3'外切酶活性将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而荧光监测系统可接收到荧光信号,即每扩增一条DNA链,就有一个荧光分子形成,实现了荧光信号的累积与PCR产物的形成完全同步。
TaqMan 探针设计原则
长度 30-45bp,Tm 比引物至少高 5℃。
尽量靠近上游引物。
5' 端不要有 G,G 会有淬灭作用,影响定量。
3' 端必须封闭,防止探针在 PCR 中延伸。
优缺点
| 优点 | 缺点 |
|---|---|
| 1. 对目标序列有很高的特异性——特别适合于 SNP 检测 | 1. 价格较高 2. 只适合于一个特定的目标 3. 不能进行融解曲线分析 4. 背景高 |
两种方法的选择:SYBR Green I 法便宜、通用、上手快,适合基因表达初筛和大规模筛选;TaqMan 法特异性好,适合病原体诊断、SNP 分型等需要精准打击的应用。两者不是替代关系,而是互补关系。
这是荧光定量PCR的直接应用,对病毒以及病菌的浓度、转基因的拷贝数、RNAi 基因失活率等进行绝对定量分析。
(1) 对未知 SNP 进行分析:即找寻未知的 SNP 或确定某一未知 SNP 与某遗传病的关系。最有效的方法是对那些含有 SNP 的 DNA 链进行测序,确认突变的位置和碱基类别。
(2) 对已知 SNP 进行分析:也就是基因分型,即对不同群体 SNP 遗传多样性检测或在临床上对已知致病基因的遗传病进行基因诊断。比较成熟的技术有 TaqMan 探针法,尤其适合样品量特别大的情况。
例如比较经过不同处理样本之间特定基因的表达差异(如药物处理、物理处理、化学处理等),特定基因在不同时相的表达差异以及 cDNA 芯片或差异结果的确证。
应用领域小结:绝对定量分析(病毒/病菌浓度、转基因拷贝数)→ SNP 检测分析(未知 SNP 寻找、已知 SNP 基因分型)→ 基因表达差异分析(不同处理、不同时相的基因表达比较)。三大应用覆盖了从基础研究到临床诊断的主要需求。
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